J Plant Biotechnol 2020; 47(2): 141-149
Published online June 30, 2020
https://doi.org/10.5010/JPB.2020.47.2.141
© The Korean Society of Plant Biotechnology
김수정 · 박태호
Correspondence to : e-mail: thzoo@daegu.ac.kr
This is an Open-Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial License (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.
Solanum hougasii, one of the wild Solanum species, has been widely used in potato breeding since it exhibits excellent resistance to diverse important pathogens. S. hougasii can be directly crossed with the cultivated tetraploid potato (S. tuberosum) owing to its EBN (Endosperm Balanced Number) value of 4, which is same as that of S. tuberosum although it is an allohexaploid. In this study, the complete chloroplast genome sequence of S. hougasii was obtained by next-generation sequencing technology, and compared with that of the chloroplast genome of seven other Solanum species to identify S. hougasii-specific PCR markers. The length of the complete chloroplast genome of S. hougasii was 155,549 bp. The structural organization of the chloroplast genome in S. hougasii was found to be similar to that of seven other Solanum species studied. Phylogenetic analysis of S. hougasii with ten other Solanaceae family members revealed that S. hougasii was most closely related to S. stoloniferum, followed by S. berthaultii, and S. tuberosum. Additional comparison of the chloroplast genome sequence with that of five other Solanum species revealed five InDels and 43 SNPs specific to S. hougasii. Based on these SNPs, four PCR-based markers were developed for the differentiation of S. hougasii from other Solanum species. The results obtained in this study will aid in exploring the evolutionary and breeding aspects of Solanum species.
Keywords PCR-based marker, cpDNA, Potato, SNPs, Solanum hougasii
엽록체 또는 미토콘드리아와 같은 세포질 유전체(cpDNA 또는 mtDNA)는 그들만의 특별한 유전체를 가지며 광합성, 웅성불임 등과 같은 중요한 세포성 기능을 하는 특별한 유전자들로 구성되어 있다(Jheng et al. 2012; Ruiz and Daniell 2005). 감자는 기본적으로 다섯 가지의 cpDNA 타입(A, C, S, T and W)을 가지고 있으며, 대부분 재배종 감자의 경우 β 타입의 mtDNA와 함께 T 타입의 cpDNA로 알려져 있다(Hosaka and Hanneman 1988). T 타입과 다른 cpDNA 타입의 가장 큰 차이는 cpDNA 상의
본 연구에서는 앞서 Cho et al. (2018)에 의해 간략히 보고된 바 있는
본 연구에 사용된 식물 재료로는 엽록체 전장 유전체 분석을 위해 감자 야생종
DNA 분리에는 Genomic DNA Extraction kit (Plants) (RBC, New Taipei City, Taiwan)가 이용되었으며, 기내 식물체 또는 온실에서 유지되고 있는 모든 식물 재료를 대상으로 약 100 mg의 잎을 채취하여 수행되었다.
또한,
확인된 InDel 영역에서의
SNP 마커의 경우, 우선
추정되는 염기서열의 오류는 62.73x의 데이터를 맵핑하는 과정과 한 쌍의 inverted repeat 영역(IRs), small single copy 영영(SSC), large single copy 영역(LSC) 간의 경계 부분의 염기서열을 포함하는 다수의 영역을 대상으로 한 PCR과 ABI3730에 의한 BigDye Terminator Cycle Sequencing에 의해 수정되었다. 최종적인
Table 1 . Comparative analysis of the complete chloroplast genome sequence of
Species | Accession no. | Total Length (bp) | GC content (%) | Total No. of genes | No. of tRNA | No. of rRNA | Reference |
---|---|---|---|---|---|---|---|
MF471372 | 155,549 | 38 | 135 | 36 | 4 | This study | |
MF471373 | 155,567 | 38 | 135 | 36 | 4 | Concurrent study | |
MF471371 | 155,532 | 38 | 136 | 36 | 4 | Kim and Park (2019) | |
KY419708 | 155,533 | 38 | 137 | 39 | 4 | Kim et al. (2018) | |
KM489055 | 155,432 | 38 | 139 | 39 | 4 | Cho and Park (2016) | |
KM489054 | 155,525 | 37.5 | 133 | 33 | 4 | Cho et al. (2016) | |
NC008096 | 155,296 | 37.5 | 131 | 36 | 4 | Gargano et al. (2005) | |
KM489056 | 155,312 | 37 | 130 | 30 | 4 | Cho et al. (2016) | |
DQ347958 | 155,371 | 38 | 133 | 30 | 4 | Daniell et al. (2006) |
*The data has been partially adopted from Kim and Park (2019).
본 연구결과로 얻은
분자마커의 개발은 다중 정열의 결과로 얻은 다수의 InDel과 SNP 중, 다중 정열에 이용된 6종의 cpDNA의 비교에서
InDel 영역을 대상으로 프라이머를 디자인하여 PCR을 할 경우 분자마커의 다형성에 의해 효과적으로 식물종을 구별할 수 분자마커를 개발하여 적용되고 있다(Cho et al. 2015; Garcia-Lor et al. 2013; Yamaki et al. 2013). 하지만, 본 연구에서는 앞서 언급된 5개의
SNP를 기반으로 한 분자마커 개발에서는 SNP을 포함하는 영역을 PCR로 증폭할 수 있는 프라이머를 제작하여 PCR을 수행한 후 PCR 결과물을 대상으로 SNP 서열에서 DNA 단편을 절단할 수 있는 적절한 제한효소를 이용하여 개발하는 것으로 Konieczny and Ausubel (1993)에 의해 CAPS (Cleaved Amplified Polymorphism Sequence) 마커로 명명되었으며, 이는
Table 2 . The primers and restriction enzymes used to generate
Marker name | Region | Sa | Primer sequence | Size (bp)b | REc |
---|---|---|---|---|---|
SH2_SNP_1 | F | TGAGTTAGCAACCCGAAGAA | 394 | ||
R | ATTGTAGTTTTGTTTTCCAC | ||||
SH2_SNP_5 | F | CTAGTATCATAAGCGTTTCC | 399 | ||
R | TAAGCTTAACACAAAAGCAG | ||||
SH2_SNP_13 | F | AGGATTGAGCCGAATACAAC | 384 | ||
R | AAAAGAGATTTGTCCTCTCC | ||||
SH2_SNP_15 | F | TTGTGAAAGTTACTGAATGG | 387 | ||
R | CACTGTGGAACAATTGAAGG |
aF and R indicate forward and reverse stand of primers, respectively.
bThe expected size of the PCR fragments were obtained based on the chloroplast sequence of
cRestriction enzymes for generating
엽록체 전장유전체는 감자의 신품종 육성과정에서 야생종을 활용할 경우 그 정보를 활용하여 분자마커를 개발하는데 활용될 뿐 만 아니라 그 특성은 진화와 관련된 연구에도 활용되고 있다(Bohs and Olmstead 1997; Hosaka and Sanetomo 2012). 육종적 측면에서는 체세포 융합이나 식물조직배양에서의 재분화 과정에서 cpDNA의 무작위 배분과 mtDNA (mitochondrial genome)의 높은 재조합 빈도는
본 연구는 농림축산식품부・해양수산부・농촌진흥청・산림청의 재원으로 농림식품기술기획평가원 Golden Seed 프로젝트 사업(식량종자사업단, 과제번호: 213009-05-4-WT411)의 지원을 받아 수행되었음.
J Plant Biotechnol 2020; 47(2): 141-149
Published online June 30, 2020 https://doi.org/10.5010/JPB.2020.47.2.141
Copyright © The Korean Society of Plant Biotechnology.
김수정 · 박태호
Soojung Kim · Tae-Ho Park
Department of Horticulture, Daegu University, Gyeongsan 38453, South Korea
Correspondence to:e-mail: thzoo@daegu.ac.kr
This is an Open-Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial License (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.
Solanum hougasii, one of the wild Solanum species, has been widely used in potato breeding since it exhibits excellent resistance to diverse important pathogens. S. hougasii can be directly crossed with the cultivated tetraploid potato (S. tuberosum) owing to its EBN (Endosperm Balanced Number) value of 4, which is same as that of S. tuberosum although it is an allohexaploid. In this study, the complete chloroplast genome sequence of S. hougasii was obtained by next-generation sequencing technology, and compared with that of the chloroplast genome of seven other Solanum species to identify S. hougasii-specific PCR markers. The length of the complete chloroplast genome of S. hougasii was 155,549 bp. The structural organization of the chloroplast genome in S. hougasii was found to be similar to that of seven other Solanum species studied. Phylogenetic analysis of S. hougasii with ten other Solanaceae family members revealed that S. hougasii was most closely related to S. stoloniferum, followed by S. berthaultii, and S. tuberosum. Additional comparison of the chloroplast genome sequence with that of five other Solanum species revealed five InDels and 43 SNPs specific to S. hougasii. Based on these SNPs, four PCR-based markers were developed for the differentiation of S. hougasii from other Solanum species. The results obtained in this study will aid in exploring the evolutionary and breeding aspects of Solanum species.
Keywords: PCR-based marker, cpDNA, Potato, SNPs, Solanum hougasii
엽록체 또는 미토콘드리아와 같은 세포질 유전체(cpDNA 또는 mtDNA)는 그들만의 특별한 유전체를 가지며 광합성, 웅성불임 등과 같은 중요한 세포성 기능을 하는 특별한 유전자들로 구성되어 있다(Jheng et al. 2012; Ruiz and Daniell 2005). 감자는 기본적으로 다섯 가지의 cpDNA 타입(A, C, S, T and W)을 가지고 있으며, 대부분 재배종 감자의 경우 β 타입의 mtDNA와 함께 T 타입의 cpDNA로 알려져 있다(Hosaka and Hanneman 1988). T 타입과 다른 cpDNA 타입의 가장 큰 차이는 cpDNA 상의
본 연구에서는 앞서 Cho et al. (2018)에 의해 간략히 보고된 바 있는
본 연구에 사용된 식물 재료로는 엽록체 전장 유전체 분석을 위해 감자 야생종
DNA 분리에는 Genomic DNA Extraction kit (Plants) (RBC, New Taipei City, Taiwan)가 이용되었으며, 기내 식물체 또는 온실에서 유지되고 있는 모든 식물 재료를 대상으로 약 100 mg의 잎을 채취하여 수행되었다.
또한,
확인된 InDel 영역에서의
SNP 마커의 경우, 우선
추정되는 염기서열의 오류는 62.73x의 데이터를 맵핑하는 과정과 한 쌍의 inverted repeat 영역(IRs), small single copy 영영(SSC), large single copy 영역(LSC) 간의 경계 부분의 염기서열을 포함하는 다수의 영역을 대상으로 한 PCR과 ABI3730에 의한 BigDye Terminator Cycle Sequencing에 의해 수정되었다. 최종적인
Table 1 . Comparative analysis of the complete chloroplast genome sequence of
Species | Accession no. | Total Length (bp) | GC content (%) | Total No. of genes | No. of tRNA | No. of rRNA | Reference |
---|---|---|---|---|---|---|---|
MF471372 | 155,549 | 38 | 135 | 36 | 4 | This study | |
MF471373 | 155,567 | 38 | 135 | 36 | 4 | Concurrent study | |
MF471371 | 155,532 | 38 | 136 | 36 | 4 | Kim and Park (2019) | |
KY419708 | 155,533 | 38 | 137 | 39 | 4 | Kim et al. (2018) | |
KM489055 | 155,432 | 38 | 139 | 39 | 4 | Cho and Park (2016) | |
KM489054 | 155,525 | 37.5 | 133 | 33 | 4 | Cho et al. (2016) | |
NC008096 | 155,296 | 37.5 | 131 | 36 | 4 | Gargano et al. (2005) | |
KM489056 | 155,312 | 37 | 130 | 30 | 4 | Cho et al. (2016) | |
DQ347958 | 155,371 | 38 | 133 | 30 | 4 | Daniell et al. (2006) |
*The data has been partially adopted from Kim and Park (2019)..
본 연구결과로 얻은
분자마커의 개발은 다중 정열의 결과로 얻은 다수의 InDel과 SNP 중, 다중 정열에 이용된 6종의 cpDNA의 비교에서
InDel 영역을 대상으로 프라이머를 디자인하여 PCR을 할 경우 분자마커의 다형성에 의해 효과적으로 식물종을 구별할 수 분자마커를 개발하여 적용되고 있다(Cho et al. 2015; Garcia-Lor et al. 2013; Yamaki et al. 2013). 하지만, 본 연구에서는 앞서 언급된 5개의
SNP를 기반으로 한 분자마커 개발에서는 SNP을 포함하는 영역을 PCR로 증폭할 수 있는 프라이머를 제작하여 PCR을 수행한 후 PCR 결과물을 대상으로 SNP 서열에서 DNA 단편을 절단할 수 있는 적절한 제한효소를 이용하여 개발하는 것으로 Konieczny and Ausubel (1993)에 의해 CAPS (Cleaved Amplified Polymorphism Sequence) 마커로 명명되었으며, 이는
Table 2 . The primers and restriction enzymes used to generate
Marker name | Region | Sa | Primer sequence | Size (bp)b | REc |
---|---|---|---|---|---|
SH2_SNP_1 | F | TGAGTTAGCAACCCGAAGAA | 394 | ||
R | ATTGTAGTTTTGTTTTCCAC | ||||
SH2_SNP_5 | F | CTAGTATCATAAGCGTTTCC | 399 | ||
R | TAAGCTTAACACAAAAGCAG | ||||
SH2_SNP_13 | F | AGGATTGAGCCGAATACAAC | 384 | ||
R | AAAAGAGATTTGTCCTCTCC | ||||
SH2_SNP_15 | F | TTGTGAAAGTTACTGAATGG | 387 | ||
R | CACTGTGGAACAATTGAAGG |
aF and R indicate forward and reverse stand of primers, respectively..
bThe expected size of the PCR fragments were obtained based on the chloroplast sequence of
cRestriction enzymes for generating
엽록체 전장유전체는 감자의 신품종 육성과정에서 야생종을 활용할 경우 그 정보를 활용하여 분자마커를 개발하는데 활용될 뿐 만 아니라 그 특성은 진화와 관련된 연구에도 활용되고 있다(Bohs and Olmstead 1997; Hosaka and Sanetomo 2012). 육종적 측면에서는 체세포 융합이나 식물조직배양에서의 재분화 과정에서 cpDNA의 무작위 배분과 mtDNA (mitochondrial genome)의 높은 재조합 빈도는
본 연구는 농림축산식품부・해양수산부・농촌진흥청・산림청의 재원으로 농림식품기술기획평가원 Golden Seed 프로젝트 사업(식량종자사업단, 과제번호: 213009-05-4-WT411)의 지원을 받아 수행되었음.
Table 1 . Comparative analysis of the complete chloroplast genome sequence of
Species | Accession no. | Total Length (bp) | GC content (%) | Total No. of genes | No. of tRNA | No. of rRNA | Reference |
---|---|---|---|---|---|---|---|
MF471372 | 155,549 | 38 | 135 | 36 | 4 | This study | |
MF471373 | 155,567 | 38 | 135 | 36 | 4 | Concurrent study | |
MF471371 | 155,532 | 38 | 136 | 36 | 4 | Kim and Park (2019) | |
KY419708 | 155,533 | 38 | 137 | 39 | 4 | Kim et al. (2018) | |
KM489055 | 155,432 | 38 | 139 | 39 | 4 | Cho and Park (2016) | |
KM489054 | 155,525 | 37.5 | 133 | 33 | 4 | Cho et al. (2016) | |
NC008096 | 155,296 | 37.5 | 131 | 36 | 4 | Gargano et al. (2005) | |
KM489056 | 155,312 | 37 | 130 | 30 | 4 | Cho et al. (2016) | |
DQ347958 | 155,371 | 38 | 133 | 30 | 4 | Daniell et al. (2006) |
*The data has been partially adopted from Kim and Park (2019)..
Table 2 . The primers and restriction enzymes used to generate
Marker name | Region | Sa | Primer sequence | Size (bp)b | REc |
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SH2_SNP_1 | F | TGAGTTAGCAACCCGAAGAA | 394 | ||
R | ATTGTAGTTTTGTTTTCCAC | ||||
SH2_SNP_5 | F | CTAGTATCATAAGCGTTTCC | 399 | ||
R | TAAGCTTAACACAAAAGCAG | ||||
SH2_SNP_13 | F | AGGATTGAGCCGAATACAAC | 384 | ||
R | AAAAGAGATTTGTCCTCTCC | ||||
SH2_SNP_15 | F | TTGTGAAAGTTACTGAATGG | 387 | ||
R | CACTGTGGAACAATTGAAGG |
aF and R indicate forward and reverse stand of primers, respectively..
bThe expected size of the PCR fragments were obtained based on the chloroplast sequence of
cRestriction enzymes for generating
Ju-Ryeon Jo ・Tae-Ho Park
J Plant Biotechnol 2024; 51(1): 158-166Ju-Ryeon Jo ・Tae-Ho Park
J Plant Biotechnol 2024; 51(1): 143-151Seoyeon Son ・Tae-Ho Park
J Plant Biotechnol 2024; 51(1): 121-128
Journal of
Plant Biotechnology